菊花的组织培养实验设计_菊花的组织培养技术

2020-02-27 其他范文 下载本文

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菊花的组织培养实验设计

实验名称 年级、组 组 员菊花的组织培养实验设计 2012级10班 第5组

杨素华、叶利萍、佐尚秀

李定峰、欧 霞、刘新鹏

刘昌恒、颜政委、李元凤

2014年12月6日

菊花的组织培养实验设计

一 实验目标

1.掌握植物组织培养的原理。

2.学习植物组织培养的基本技术,进行菊花或其他植物的组织培养。

二 实验原理

植物组织培养主要利用了植物细胞的全能性,在适宜的条件下,细胞具有形成一个新的个体的潜在能力。细胞全能性(totipotency)就是指每个生活的细胞中都包含有产生一个完整机体的全套基因.植物组织培养的大致过程是:在无菌条件下,将植物器官或组织(如芽、茎尖、根尖或花药)的一部分切下来,放在适当的人工培养基上进行培养,这些器官或组织就会进行细胞分裂,形成新的组织。不过这种组织没有发生分化,只是一团薄壁细胞,叫做愈伤组织。再适合的光照、温度和一定的营养物质与激素等条件下,愈伤组织便开始分化,产生出植物的各种器官和组织,进而发育成一棵完整的植株。

三 实验材料

1.实验设施

培养基制备、灭菌和材料处理室、高压灭菌锅、无菌接种室、组织培养室、水浴锅、超净工作台或简易接种箱、2.实验仪器

解剖刀、三角烧瓶(100mL)、烧杯、量筒、锥形瓶、容量瓶、移液管、培养皿、封口膜、棉线、分析天平、长镊子、剪刀、牛皮纸、圆滤纸。

3.实验材料

在晴天,最好是中午或下午采集无病毒、无病害、生长良好的,易于诱导的未开花的菊花植株茎上部新萌生的侧枝为组织培养材料。

4.实验试剂

准备制备MS培养基、乙醇、1mol/LHCl、1mol/LNaOH、氯化汞(升汞)或次氯酸钠、琼脂、6-苄基氨基腺嘌呤(6-BA)、吲哚乙酸(IAA)或2,4-D(生长素类似物)、萘乙酸(NAA)及蔗糖

四 实验的具体操作过程

1.配置培养基

(1)愈伤组织诱导培养基:MS培养基(蔗糖含量为10g/L,2,4–D含量为2mg/L,琼脂10g/L)。

(2)试验培养基:在MS培养基中加入IAA和6–BA。吲哚乙酸(IAA)先用少量0.1mol/LNaOH溶解,6-苄基氨基腺嘌呤先用少量0.1mol/LHCl溶解,然后用蒸馏水稀释,再加入培养基中。

2.灭菌 待灭菌的物品有:培养基、装有滤纸的培养皿等

具体灭菌步骤是:先将蒸馏水装入1000mL锥形瓶的3/4处,用封口膜和牛皮纸两层封口,再将装有滤纸的培养皿包起来,然后,连同已配置好的培养基一起放入高压灭菌锅内,在1.2个大气压下灭菌 10~15min,冷却后备用,注意灭菌时间不得超过15min,以免培养基变性。

3.组培材料的灭菌 4.接种

无菌接种前:用70%的酒精消毒工作台,点燃酒精灯。所有工作都必须在酒精灯控制下进行,器械使用前后都要用火焰灼烧灭菌。

接种操作:插入外植体时形态学上端朝上,每个锥形瓶接种7~8个外植体,接种后将封口膜重新扎好,后送进组培室。

5.培养:应该放在无菌箱中进行,并定期进行消毒,温度控制在18~22摄氏度,相对湿度应保持在60%~70%,每天应保证至少12h的光照,光照强度约为1500Lx,也可使用自然光。根长>1cm时,可出瓶移栽。

6.移栽与栽培:移栽前,打开封口膜,在培养间生长几日;移栽时候,用流水将依附于小苗根部的培养基洗净,将幼苗移植到消过毒的蛭石或珍珠岩等环境中生活一段时间,进行壮苗。最后进行露天栽培。

五 注意事项

1.材料的选择与处理

尽量选择未开花植株的茎上部分新萌生的侧枝,带菌少,易诱导。外植体消毒要足够,减少外植体自身带菌造成的误差

2.控制好培养条件

接种时全程无菌操作,温度控制在18-22摄氏度,不宜过高伤害外植体,PH在5.8左右。

第九节 菊花的组织培养(二)

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