包虫病_包虫病计划

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前言

包虫病是由细粒棘球蚴幼虫期引起的人畜共患病，也是影响羊的重要蠕虫病。包虫病常见于第三世界国家，中东地区极为流行，特别是在人类与家畜和狗密切接触的农村社区[1-2]地中海地区国家多发生囊性包虫病，它可以影响任何器官，最常见的部位是肝脏（70％）和肺部（20％）[3]。中国也是包虫病高发区之一，在西北畜牧业发达地区的人群血清学阳性率为 1.06%～32%，患病率为0.1%～7.64%，而动物感染棘球蚴病每年造成的我国畜产品经济损失则达8亿元以上[4-5]。家养动物则是包虫病流行过程中的中间宿主，由于包虫病诊断困难，检验和防控包虫病具有重要的卫生意义和经济意义[6]。包虫病检验技术

1.1 临床诊断技术

临床上主要根据临床症状及患者体征结合 X 射线、B 超、CT 扫描和磁共振(MRI)等一些物理成像的方法来诊断包虫病[7]。其中超声便携快捷、费用低廉,是包虫病的首选检查方法[8]。

临床诊断存在的问题是包囊与肿瘤容易混淆。肺泡型包虫病由于较长的孵育时间，加上仪器水平影响，临床误诊率和漏诊率较高[9]。与常规彩超相比，超声造影技术和超声弹像技作为最新的诊断技术，具有较好的检出率。邓薇[10]根据随机数字表的方法肝占位性病变患者中选取80例作为研究对象，入组患者均常规接受普通超声和超声弹性成像检查，研究表明，与普通超声检测相比超声弹性成像检测的肝泡型包虫病、原发性肝癌的病灶面积、周长以及体积明显增加，对可疑肝泡型包虫病患者进行超声弹性成像技术检查，有助于明确病灶硬度，提高检出准确性，效果显著，值得临床推广和应用。才让卓玛等[11]通过常规超声和超声造影技术，检查肝泡型包虫病的肝实质性占位性病变患78 例，表明超声造影诊断肝泡型包虫病的检出率为94.9%，显著高于常规超声的76.9%（P

免疫学诊断为包虫病诊断中重要组成部分，是对影像学诊断的重要补充。免疫学技术是通过抗原和抗体的特异性结合反应和信号放大技术达到鉴别物种方法。免疫诊断主要包括酶联免疫吸附法(ELISA)、蛋白质印迹法(Western blotting)、免疫胶体金法(immune colloidal gold technique)及包虫病皮内试验(Casoni)等方法[12]。包囊液是免疫诊断抗原的主要来源，早期免疫学诊断是将收集的囊液仅简单离心处理，即使用囊液粗抗原用于检测诊断，其特点是获取方便，检测的灵敏度高，可达95%[13]。免疫学诊断的方法不同，敏感度差异较大。J Wuestenberg等[14]研究表明，比较疑诊肝脏囊性棘球蚴病的诊断方法中，间接血凝试验（IHA）和棘球绦虫特异性免疫球蛋白E（IgE）对多房棘球绦虫和总IgE的灵敏度（60.9％，68.4％）远远高于酶联免疫吸附试验（38.9％）。目前，免疫层试纸为包虫病诊断提供了简单，特异，快速的方法，不需要专门的化学试剂和设备。Zhuo X等[15]在检测感染绵羊的E.granulosus抗体中，利用免疫色谱条带，显示阳性率分别为2.61％，证实与肝片吸虫，捻转血矛线虫，小反刍兽疫病毒（PPRV）和口蹄疫病毒（FMDV）阳性血清无交叉反应。最新研究中，放射性标记的分子可能有助于推进新的诊断和治疗方式。S.Hadj Rabia[16]等用碘125标记的抗体及其抗体，并从放射化学纯度和免疫反应性的角度来表征放射性标记的分子，其纯度达到94％，96％〜98％，分别为棘球蚴抗原和IgG。在竞争性放射免疫测定试验（CRIA）中用放射性标记的抗原（125I-HHF-Ag）与阴性血清（19.25±14.84）相比，患有包虫病患者血清的抗原结合能力（65.63±9.12）显示出高度显着性差异。1.3 核酸诊断技术

随着对寄生虫病深入的研究和现代分子生物学等先进技术的应用，人们发现在寄生虫早期侵染过程中，患者血浆/血清等体液中能够检测到特异的寄生虫核酸，并且核酸浓度同患者病情进展呈现密切关系。寄生虫循环核酸有望成为寄生虫早期感染的新型诊断标志物[17]。发现寄生虫种或发育阶段特异性核苷酸序列并设计DNA 探针或引物从而检测待检样品中的寄生虫DNA，是利用核酸诊断技术诊断寄生虫病的理论基础。

Wichmann Dominic等[18]以47名患者及来自国内不同中间宿主的包虫卵囊标本，包括来自屠宰场的牛，绵羊，山羊和水牛作为研究对象，通过对编码细胞色素c氧化酶I（cox1）和小亚基核糖体RNA（rrnS）的线粒体DNA（mtDNA）基因的直接测序进行分子表征。结果显示，对于绵羊品系（G1），存在针对cox1和rrnS的七种和三种不同微变体的高发病率。这是对伊拉克E.杆菌分子基因分型的第一个贡献，观察到G1以外的基因型。H Can等[19]通过研究本研究中开发的M-RT-PCR为棘球蚴病的诊断提供了一种灵敏，特异，快速和可靠的方法，并且可以从囊肿样本中鉴别鹅膏绦虫和肠浒苔。2 包虫病的防控技术

2.1 犬类驱虫

由于犬类动物是棘球蚴的终末宿主，因此做好犬类驱虫工作对防治包虫病有着很重要的作用[19]。胡燕等[20]研究表明，经过大量临床试验，吡喹酮咀嚼片在农牧区犬只的自动吞服率可达85%以上，保证了药物的吞服率和对犬只体内棘球绦虫的驱除率，为包虫病防控工作的顺利实施与开展奠定了坚实的基础。新西兰为切实落实每年8次驱虫，严格执行45天驱虫，取得了良好的防控效果；阿根廷严格按照45天驱虫，狗的感染率也大幅度下降（1%～5%），但问题是儿童的感染率在下降到十万分之五之后，再没有进一步的下降，这种低水平的感染率持续了20年没有变化[21]。2.2 疫苗防治

疫苗是防控传染病最有效的手段之一，其典型的特点是投入小、效益大。我国已经有了羊包虫病疫苗，在试点地区的试验表明，羊包虫病疫苗对羊只的有效保护率可以达到94%。2014 年，农业部印发文件，首次将包虫病列为推荐免疫病种之一。2017 年，农业部将包虫病纳入国家动物疫病强制免疫计划：在包虫病流行区对新补栏羊只进行包虫病免疫。如今，羊包虫病基因工程亚单位重组疫苗（EG95）已经开始大规模推广[22]。MW Lightowlers[23]表明，针对CE的有效疫苗的开发似乎是控制该传染病的最有前途的策略，开发针对包虫病的疫苗取得了一些进展，但此类免疫疗法通常不能诱导足够的免疫应答。因此，鉴定具有高免疫原性的抗原（Ag）并开发针对CE的有效疫苗和佐剂构建体是非常有意义的。为此，可以应用各种工具，包括基于免疫的基因组学和蛋白质组学，免疫信息学，系统疫苗学和数学/计算建模。

参考文献

[1] Firas Mahmoud Faleh Hayajneh,Abdulrahman Mahmuod H.Althomali,Abdelrahman T.M.Nasr.Prevalence and characterization of hydatidosis in animals slaughtered at Al Taif abattoir, Kingdom of Saudi Arabia[J].Open Journal of Animal Sciences,2014,04(01).[2] Khalkhali H R,Foroutan M,Khademvatan S,Majidiani H,Aryamand S,Khezri P,Aminpour

A.Prevalence of cystic echinococcosis in Iran: a systematic review and meta-analysis.[J].Journal of helminthology,2018,92(3).[3] Farah Adel,José Manuel Ramia,Luis Gijón,Roberto de la Plaza-Llamas,Vladimir

Arteaga-Peralta,Carmen Ramiro-Perez.Extrahepatic and extrapulmonary hydatidosis[J].Cirugía y Cirujanos(English Edition),2017.[4] Current on Chinese significance parasitosis by Department of Healthto iue[C].MOH web, 2005,5,17

[5] Jiang Ci-peng.Extended review on echinococciasis'prevalence in ourcountry[J].Chinese

Journal of Epidemiology,2006,2:124～l27

[6] Abdel-Azeem S.Abdel-Baki,Esam Almalki,Saleh Al-Quarishy.Prevalence and

characterization of hydatidosis in Najdi sheep slaughtered in Riyadh city, Saudi Arabia[J].Saudi Journal of Biological Sciences,2018.[7]李伟,高金亮.包虫病及其诊断技术概述[J].中国卫生检验杂志,2017,27(13):1974-1976.[8]何顺伟.多房棘球蚴myophilin、LDH蛋白的免疫原性与循环核酸检测研究[D].青海大学,2017

[9] Meinel T R, Gottstein B, Geib V, et al.Vertebral alveolar echinococcosis-a case report, systematic analysis, and review of the literature.[J].Lancet Infectious Diseases, 2017.[10] 邓薇.超声弹性成像技术在肝泡型包虫病诊断中的应用价值分析[J].肝脏, 2018(1):46-48.[11] 才让卓玛, 南嘉格列, 李晓君,等.常规彩超与超声造影诊断肝泡型包虫病效能比较[J].实用肝脏病杂志, 2018, 21(2):305-306.[12] 王成程,韩国全,王利娜,唐廷廷,蒋玉涵,陈传君.包虫病快速检测技术研究进展[J].食品安全质量检测学报,2018,9(07):1484-1490.[13] Siracusano A, Bruschi F.Cystic echinococcosis: progre and limits in epidemiology

and immunodiagnosis[J].Paraitologia, 2006, 48(1-2):65-66.[14] Wuestenberg J, Gruener B, Oeztuerk S, et al.Diagnostics in cystic echinococcosis: serology versus ultrasonography.[J].Turkish Journal of Gastroenterology the Official Journal of Turkish Society of Gastroenterology, 2014, 25(4):398-404.[15] Zhuo X, Yu Y, Chen X, et al.Development of a colloidal gold immunochromatographic

strip based on HSP70 for the rapid detection of Echinococcus granulosus in sheep[J].Veterinary Parasitology, 2017, 240:34.[16]S.Hadj Rabia,F.Benmoua,A.Benzaid,A.Baz.Hydatidosis: Preparation and

evaluation of

radiolabeled

antigens

and

antibodies[J].Experimental

Parasitology,2018,187.[17] 何顺伟.多房棘球蚴myophilin、LDH蛋白的免疫原性与循环核酸检测研究[D].青海大学,2017

[18] Wichmann Dominic,Panning Marcus,Quack Thomas,Kramme Stefanie,Burchard

Gerd-Dieter,Grevelding Christoph,Drosten Christian.Diagnosing schistosomiasis by detection of cell-free parasite DNA in human plasma.[J].PL o S Neglected Tropical Diseases(Online),2009,3(4).[19] Can H, İnceboz T, Caner A, et al.[Detection of Echinococcus granulosus and

Echinococcus multilocularis in cyst samples using a novel single tube multiplex real-time polymerase chain reaction].[J].Mikrobiyoloji Bu lteni, 2016, 50(2):266.[19] 孙鹏.羊包虫病的防控策略研究[J].今日畜牧兽医,2018,34(04):18.[20] 胡燕,游锡火,吕剑恒.犬包虫病防治专用驱虫药——吡喹酮咀嚼片的研制与应用[J].中国动物保健,2017,19(07):86-89.[21] 张文宝,郭刚,李军.包虫病的危害与控制策略的选择[J].中国动物保健,2017,19(07):4-7.[22] 让疫苗成为包虫病防控利器[N].人民政协报,2017-07-19(007).[23] Lightowlers M W.Cestode vaccines: origins, current status and future prospects[J].Parasitology, 2006, 133(S2):27-42.