检验科_检验科标准

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目 录

第一章 临床血液标本采集…………………………………………………..1 第二章 尿液常规检查标本………………………………………………….12 第三章 痰及下呼吸道标本采集…………………………………………13 第四章 脑脊液检验标本……………………………………………………..13 第五章 微生物检查的标本采集和运送…………………………….14

第一节 血液及骨髓标本的采集及运送…………………..16 第二节 脑脊液标本的采集及运送…………………………..17 第三节 无菌体液标本的采集及运送……………………….17 第四节 痰及下呼吸道标本的采集及运送……………….18 第五节 粪便标本的采集及运送………………………………..19 第六节 脓液和创伤分泌物标本的采集及运送……….20 第七节 尿液标本的采集及运送……………………………….21 第六章

核医学科标本采集注意事项及流程…………………….22

第一章 临床血液标本采集

一、检验申请

规范填写检验申请单，项目填写用词规范、字迹清楚、避免涂改及重复电击检验项目。对于被检查者的特殊情况，应当在申请单上注明，供检验人员审核结果参考。要求检验人员加强与临床医护人员沟通，及时解决检验项目申请单和标本存在的问题及疑问。

二、病人准备

医护、检验人员指导病人做好准备。考虑饮食、运动、生理周期、药物等对检验结果可能产生的影响，指导病人正确采集标本。

（一）控制饮食

1、大多数检验项目都要求在早晨空腹采血，（咖啡、浓茶、高糖及可乐类饮料也应禁食）。

2、肝功、血脂、凝血项目要求禁食12—16小时，且提前一天的晚餐应当避免饮酒、禁食高脂肪、高蛋白质饮食。

3、饮食对血脂检验影响重大，至少应当在抽血前的3天以内注意保持基础饮食。

（二）避免药物影响

许多药物（如VitC、雌激素、降血脂药等）对检验结果，尤其是血、尿、便的生化检验结果产生影响，抗生素应用将对微生物培养结果产生直接的影响。申请检验前医生应该了解待检者近期及当前相关药物使用情况并给予适当指导，在对检验结果可能产生明显的影响时，应当在检验申请单上注明。如不能停药，应记录用药情况，恰当评估药物对检验结果的影响。

（三）避免运动影响激烈运动可以使许多血液成份发生改变，甚至持续24小时以上，因此激烈运动之后不立即抽血；快步行走之后，至少休息10—15分钟然后再抽血。

（四）注意生理差异

临床医生申请检验项目及评估检验报告时，应考虑性别、年龄、昼夜节律、季节变动、生理周期（如怀孕、月经）等因素对检验结果的影响，并给予必要指导。

（五）注意体位要求

1、许多血浆生化成份在站、坐、卧三种不同体位时有明显的浓度差异。

2、静坐5—10分钟后以坐位（从肘静脉）采血为最佳。

3、卧床患者可卧位采血。

三、器材选择

1、一般采血可采用质量合格的一次性塑料注射器。从动脉采集血气标本，以采用玻璃注射器为佳,可以减少血液中氧气的弥散。

2、采用注射器采血时，7号（22G）或8号针（21G）为标准抽血用针，针头过细容易产生溶血。

3、采用真空采血管—采血针已成为国际标准，可以有效减少溶血、凝集及采血量不准的差错。

4、采集抗凝血液标本时，血标本管采用的抗凝剂的种类及浓度、体积必须正确无误。

5、在采血管处填写采血时间（如2012.10.2 7:00）。

四、采血操作

（一）正确选择血标本种类

1、大多数检验项目（生化、免疫、凝血、血培养、交叉配血等）采用静脉血标本。

2、血气分析最好采用动脉血标本，也可以从动脉化毛细血管采血（如新生儿）。

3、血常规检验（血细胞分析）可以采用静脉血或手指末梢血，但除非静脉血确实存在困难者（如：新生儿、幼儿、老人、肥胖者、严重烧伤患者、出血倾向严重的患者、病危患者），或者必须为治疗保留静脉者（如肿瘤化疗患者）可考虑采用手指末梢血外，其他人应采用静脉血。

4、血液培养：发热前抽血，8—10ml（成人），1—3ml（儿童专用瓶）。

（二）正确选择采血部位

1、末梢血液标本可从手指采集，采用耳垂末梢血作为血常规检验标本的做法已经废止。新生儿可以从足跟、大趾采集。

2、动脉血标本常从股动脉、肱动脉、桡动脉采血，新生儿及婴儿可从头皮动脉或脐动脉采血。

3、静脉血标本常从肘前静脉、腕背静脉采血，小儿和新生儿有时从颈静脉和前囟静脉采血。

4、禁止从输液三通管采血（输液成份回流、输液管内残留输液成份都将极大地影响检验结果）。

（三）尽量避免输液时采血

1、一般应在输液结束30分钟以后再采血。

2、抢救过程中必须一边输液一边采血时，应避免从正在输液的肢体上采血，应避免输液成份混入血液标本。

3、输液时采血应当遵从“远端原则”：

（1）选择在输液的对侧肢体或无输液的其他肢体（如足部）静脉采血。

（2）在四肢静脉都输液时，可以选择在输液静脉的远心端（静脉血液的上游）采血。

（3）急诊、抢救过程中在输液的同时采血，应在检验申请单上注明。

（四）避免消毒酒精引起溶血

静脉穿刺处消毒酒精未干就采血，容易引起标本溶血。

（五）合理使用止血带

1、止血带不应扎得太紧，使用时间应尽量缩短。抽血时，见到回血应立即松开止血带，减少血行阻滞时间（也不应鼓励被抽血者长时间、用力攥拳）。

2、血脂项目、出凝血时间、血常规项目抽血时止血带使用应限定在1分钟以内。

3、止血带束缚太紧、时间过长（如超过3分钟），会造成血行阻滞时间过长，因溶血、血小板激活、纤溶系统激活等原因将使以上检验项目的结果产生偏差，甚至诱导错误误诊。

4、需要重新采血时，在止血带束缚时间太长得情况下，应当在对侧手臂重新采血。

（六）“一针见血”、抽血顺畅

1、许多检验项目，尤其是涉及出凝血机制的项目（如血小板计数、出凝血项目等）均要求做到“一针见血”、抽血顺畅。

2、“一针见血”、采血顺畅，可以有效防止溶血、减少血管及组织细胞损伤导致血液成份改变对检验结果的影响。溶血造成红细胞内成份的释放、血管损伤导致凝血机制的激活，对很多检验项目将产生明显影响。

（七）控制抽血力度

1、用注射器抽血应避免大力拉、推针栓，以免血细胞因受过度挤压而增加溶血。

2、抽血时大力抽拉针栓，还易使血液自产生气泡。气泡是导致溶血、蛋白酶失活的重要原因之一。

3、从动脉采集血气分析标本，应让血液自动流入针筒，不要用负压抽取血液，以免增加血液中气体挥发及产生溶血。

（八）血液标本采集顺序

1、注射器采血可以一次采集足量血液，然后立即依如下顺序分装各标本管：血常规、出凝血、生化、免疫。

2、使用配套的真空采血管—采血针时，第一管最好不作为凝血检验标本（最大限度降低血管及组织细胞损伤造成血液成份改变对检验结果的影响，临床医生申请凝血检验项目时最好考虑与血常规或其他生化项目一起采血）。

3、使用配套的真空采血管—采血针时，采血顺序应当是：血培养、不含添加剂的采血管（血清标本管，红色、桔红色或黄色）、凝血标本管（浅蓝色）、其他标本管。

（九）减少针头导致的溶血

1、如果使用注射器抽血，应先卸除针头，再沿试管壁将血液轻缓地注入试管。

2、通过针头将血液推入试管（血液细胞二次通过针头），尤其是用力推送，将增加血液细胞受挤压而破碎的机会，导致溶血。

（十）准确控制标本量

1、抗凝血液标本的体积必须准确—真空采血管的标签纸上都有体积标志（各颜色刻度处）；抗凝血液标本的体积误差应控制在5%以内（如2ml标本管的血液体检误差应不大于0.1ml））。

2、抗凝血液标本的体积不合要求可能产生的主要影响：血液体积太多—抗凝剂比例太少，易产生血凝块；血液体积太少—抗凝剂体积相对剩余，血液成份过度稀释，且易使血细胞因渗透压降低而产生变形或溶血和抗凝剂相对过多抗凝作用加强，导致PT和APTT时间将假性延长。

（十一）尽快与抗凝剂彻底混合1、需要抗凝的血液标本，抽血后立即将血液注入含抗凝剂的标本管，并使血液与抗凝剂彻底混合，避免血液凝固。

2、真空采血管以轻轻颠倒混匀6—8次为标准操作，动作应迅速而轻柔。用力振荡、产生气泡都不可避免产生溶血。

3、如果管中抗凝剂为液体，应当使粘附在管壁、管盖上的抗凝剂能够全部与血液混合。

4、对于出凝血项目、血常规项目、白细胞表面抗原分类检验等项目，血液标本出现凝固（即使少量细胞凝集）均匀不合格。

（十二）检验标本管颜色

■ 分凝胶管（黄色管）—用于生化检验、降钙素原（PCT）； ■ 促凝剂管（红色管）—免疫学、输血；

■ 紫色管—用于血液分析、血氨测定、CD细胞、钠尿肽（BNP）；

■ 蓝色管—用于凝血测定（PT、FgAPTT、TT、D—D）； ■ 黑色—用于血沉； ■ 绿色—血液流变学。

（十三）禁止发生的抽血错误

1、各种采集管只能用对应的标本采集：将一种标本倒入另一种标本采集管中，例如将血液分析管中等等!

2、标本盖子互换法：标本已采好，但已错，将盖子互换，例如血液分析与血凝盖子互换等！

3、无菌拭子管采集非培养标本。

五、血液标本保存

（一）血液标本的保持要求

一、采血后应将标本管直立、静置，避免振荡、摔落。

二、所有标本最好都采用有盖容器盛放，防止灰尘、杂物混入，减少水分、气体蒸发，避免标本溅洒、污染。

三、标本应保持于阴凉处，避免阳光直射。某些检验项目要求避光保持血液标本。

四、标本一般应室温保存，避免过高或过低温度影响。

五、特定项目的血液标本需要低温保存（如血气标本应将封闭的血液立即冷冻至4℃然后送检）。

（二）血液标本应立即送检

1、血液标本不应在临产科室保留，应尽可能立即送往检验科。

2、检验人员应根据不同检验项目的要求及时处理标本。

（三）血液标本的有效检验时限

1、血气分析—必须立即送检，应当在30分钟内完成检验。

2、凝血项目、电解质项目、肝功及多数血液酶类生化项目—应尽快送检，在2小时内检验。

3、血常规项目—应在4小时内完成。

4、血培养项目—采血后尽快放入35℃培养箱中，超过2小时可能降低微生物培养的阳性率。

5、多数抗原检测项目—全血室温（4℃为佳）可保持24小时，或分离血清-20℃保持。

6、在环境温度超过30℃的条件下，所有标本都应尽快送往检验科室。

7、有些临床科室早晨抽血时间太早，至送检时标本已室温放置超过2小时，标本因细胞代谢、溶血、蒸发等原因造成许多项目的结果偏差，如：钾、乳酸脱氢酶、谷丙转氨酶、谷草转氨酶、血红蛋白、酸性磷酸酶等升高，钠、血糖等降低。

六、条形码粘贴方法

1、真空采血管采集的标本：打印清晰的条形码纵向粘贴在真空采血管上，上下均应留有空间，以原标签下端对齐。

2、将条形码一端贴在标本管具有刻度的一方，流出刻度，顺势贴下。

3、注意不要在条形码贴上涂写，保持条形码的完整和清晰。

七、检验科各室位置

1、生化检验、血液细胞室—医技教学楼3楼

2、免疫室、微生物室—医技教学楼4楼

3、临床检验室—门诊大楼二楼

4、急诊检验室—门诊大楼二楼

5、生物学检验室—内科住院楼十九楼

八、检验科建议标本采集时间

1、住院部病人抽血时间应控制在早晨7:00—8:00；

2、标本应在8:00—11：00左右分别送至检验科。

九、检验项目具体采血量

1、生化检验单项（血糖）3ml，两项以上4—5ml；

2、免疫学单项（梅毒）3ml，两项以上4—5ml；

3、血液分析、凝血、血氨、CD细胞—至刻度处；

4、血流变8—10ml（成人），1—3ml（儿童）动静脉瓶。

■请各科室严格遵照以上采血要求，对不符合要求的标本如量不够、抗凝血有凝块等，本科室可以拒绝不收。

第二章 尿液常规检查标本

1、尿液常规检查标本应按以下原则进行采集:

(1)新鲜晨尿最佳，门诊病人亦可留随机尿；

（2）尿液采集于干净带盖容器中，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿；

（3）避免混有经血、白带、精液和粪便；

（4）尿液标本冰箱可保持6-8h，但细胞等有型成份会有破坏，会有结晶析出；

（5）尿液成份定量检查应留取24h防腐混合尿10—20ml（须记取24h尿液总量）；

2、尿液常规检查标本采集方法：

（1）晨尿最好（安静状态下留取清晨第一次尿，浓缩，无其他影响）；

（2）随机尿较常用（随时留尿，适用于门诊和急诊病人，结果易受多种因素影响）；

（3）清洁尿（中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿，用于病原微生物生物学培养、鉴定和药敏）；

（4）24h尿（用于尿液成份24h定量检查分析，一定要教会病人留取24h尿正确方法）。量尿液总量并记录。

第三章 痰及下呼吸道标本采集

一、自然咳痰法：晨痰为佳；先漱口，清洁牙齿和口腔；再用力咳出呼吸道深部的痰；痰量不得少于1ml；咳痰困难者可先做雾化处理。

二、小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上送检。

三、支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：由临床医师实施。

第四章 脑脊液检验标本

一、采集标本前患者应该情绪稳定，避免紧张和激动，正确地配合医生进行脑脊液穿刺。

二、由临床医生行腰椎穿刺术后取得脑脊液，并分别按先后顺序收集3支无菌试管中，每管1—2ml。第一管做细菌培养，第二管做化学检查和免疫学检查，第三管做常规检测。

三、标本留取后1小时内检测完毕，标本放置时间不能过长，以免影响检测结果。

第五章 微生物检查的标本采集和运送

微生物检查的标本采集和运送

1、感染应及时采集微生物标本作病原学检查。

2、尽量在抗菌药物使用前，或停药一周后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。

3、选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。

4、采样送检后做微生物实验时应严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。

5、收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。

6、采用专用无菌容器收集标本，容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。标本中不可添加防腐剂。

7、采样后应立即送检，最好在2h内。如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。

8、尽量不要以棉花拭子收集标本。以棉拭子采集标本如咽拭子、伤口拭子等易插入恰当的运送培养基送检。淋球菌培养等标本使用专用的纤维拭子，不得使用一般棉拭子。

9、混有正常菌群的标本如痰等，不可置肉汤培养基内送检。

10、每份标本都应贴上有效的标签。

11、同一天同一检测目的的标本（血液标本除外）一般只需检测一次（份）。涂片检查最好和细菌养同时做！

第一节 血液及骨髓标本的采集及运送

一、物品准备

请到检验科微生物登记室登记领取专用血培养瓶。（周一到周日上午8:00—11:15,下午14:30—17:30）

二、采集方法

1、皮肤消毒程序

严格按以下三步法进行：（1）70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。

（2）用一根碘酊或碘伏棉签消毒皮肤（1—2%碘酊作用30s或10%碘伏作用60s），从穿刺点向外以3cm以上直径画圈进行消毒。

（3）70%酒精脱碘。对碘过敏的病人只能用70%酒精消毒，消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。

2、培养瓶消毒程序（1）用70%酒精（不能用碘酒）消毒血培养瓶橡皮塞子。（2）酒精作用60s。

（3）在血液注入血培养瓶之前，用无菌纱布或棉签清除橡皮塞子表面残余酒精，然后注入血液。（4）静脉穿刺和培养瓶接种程序。

（5）在穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可戴乳胶手套固定静脉，不可接触穿刺点。

（6）用注射器无菌穿刺取血后，直接注入血培养瓶中（勿换针头）。

（7）血标本接种到培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防止血液凝固，立即送检，切勿冷藏！

三、采血量

成人采血量是8—10ml，儿童采血量1—3ml（占总血量的1%）。骨髓采血量一般为1—2ml。

第二节 脑脊液标本的采集和运送

一、物品准备

到检验科微生物室领取无菌试管。（周一到周日上午80:0—11:15，下午14:30—17:30）。

二、采集方法

用腰穿的方法采集脑脊液。病人应先禁食，由医师以无菌手续在病人第3和第4腰椎间隙或稍低处穿刺取得，小儿则于第4和第5腰椎间隙穿刺，装入无菌试管，立即送检。如果用于检测细菌，脑脊液量应≥1ml，如果用于检测真菌或抗酸杆菌，脑脊液≥2ml。

三、标本运送和验收

标本采集后应立即送检，冬天应注意保暖，绝不可冷藏！！

第三节 无菌体液标本的采集及运送

一、物品准备

到检验科微生物室领取无菌管。（周一到周日上午8:00—11:15，下午14:30—17:30）。

二、采集方法

由临床医生按相应规程无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本。采集量5ml左右。当留取标本时，为防止无菌体液凝固，应在无菌容器内先加入灭菌肝素0.5ml（可抗凝5ml标本），再注入各种穿刺液，轻轻混合，立即送检。也可将标本直接加入血培养瓶中。

三、标本运送和验收

标本采集后常温下15min内送至微生物室，室温下可保存24h。若做真菌培养只能保存于4℃。疑有淋病性关节炎患者的关节液采集后应立即保温送检，不能置于4℃冰箱保存。

第四节 痰及下呼吸道标本的采集及运送

一、物品准备 到检验科微生物室领取无菌痰盒。（周一到周日上午8:00—11：15,下午14:30—17:30）。

二、采集方法

1、自然咳痰法

以晨痰为佳，咳痰前先用清水、冷开水反复漱口，然后用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入痰盒中，1h内送检。尽可能在用抗菌药物之前采集标本。标本量应≥1ml。痰量少或无痰者可采用雾化吸入加温至45℃的10%NaCl水溶液，使痰液易于排出。对准自然咳痰患者可无菌吸痰管抽取气管深部分泌物。

2、对昏迷、重症、难治，或伴免疫抑制，或疑是厌氧菌引起的院内感染者，可采用纤维支气管镜采集法、防污染毛刷采集法（PSB）、支气管肺泡灌洗法（BAL）、环甲膜穿刺经气管吸引法（TTA）、经胸壁针穿刺吸引法（TNA）采集标本，均由临床医生按相应操作规程采集，但必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群的污染。

3、小儿取痰法

用弯压舌板向后压舌，将棉拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳嗽。

三、标本运送和验收

标本应尽快送检，不能及时送检的标本，室温保存≤2h，4℃冰箱保存≤24h。一般每天只需做1次。

第五节 粪便标本的采集及运送

一、物品准备与检验申请

到检验科微生物室领取无菌盒子。（周一到周日上午8:00—11:15，下午14:30—17:30）。

二、采集方法

腹泻患者尽可能在急性期和应用抗菌要去之前采集标本；沙门菌感染、肠热症应在2周内采集；在不同的时间采集2—3份标本可以提高致病菌的分离率。方法有：

1、自然排便法

本法为常规方法。自然排便后，挑取有脓血，粘液部分的粪便约2—3g（液体粪便则取絮状物1—3ml）盛于灭菌广口瓶或蜡纸盒送检。若无粘液、脓血，则在粪便上多点采集送检。

2、直肠拭子法

本法只适用于排便困难患者或婴幼儿，不推荐使用拭子做常规培养。可用肥皂水将肛门周围洗净，用蘸有无菌生理盐水的棉试子插入肛门，成人约4—5cm，儿童约2—3cm，与直肠粘膜表面接触，轻轻旋转拭子，可在拭子上明显见到粪便，插入运送培养基内，立即送检。

第六节 脓液和创伤分泌物标本的采集及运送

一、物品准备与检验申请

到检验科微生物室领取无菌拭子子。（周一到周日上午8:00—11:15，下午14:30—17:30）。

二、采集方法

（一）开放脓肿

用无菌生理盐水擦洗病灶表面后，用蘸有无菌生理盐水的灭菌拭子采取脓液和病灶深部的分泌物，置无菌试管内送检。注意尽量取化脓组织与正常组织交界处的脓汁，因为脓汁中心的细菌大部分已死亡，交界处的活菌较多，会提高阳性率。开放病灶不能做厌氧菌培养。

（二）闭锁脓肿

一般采用穿刺或手术引流的方法采取。采集前先用2.5—3%的碘酊和75%的酒精消毒周围皮肤后，用无菌注射器抽取脓液送检；也可于切开排脓时用无菌棉拭子采样。要消毒脓肿表面皮肤后用无菌注射器抽取，刺入无菌橡皮塞中送检。

（三）烧伤伤口

清创，出现渗出物后用拭子用力采集病灶基底部或边缘的标本，仅做需氧培养。也可送组织标本。

（四）脓疱或水疱

酒精消毒，干燥，用针头（小儿用23号针头）挑破脓疱，用拭子采集脓疱液和基底部标本。

三、标本运送和验收

标本采集后应尽快送检，如果在1h内不能培养，应将标本4℃冷藏（培养淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌的标本除外）。

第七节 尿液标本的采集及运送

到检验科微生物室领取无菌尿杯。注意：未留标本之前不要打开盖子！

（一）采集方法

1、清洁中段尿法：是最常用的方法。最好留取早晨第一次中段尿标本，嘱咐患者睡前少饮水，清晨起床后用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻开包皮，仔细清洗，再用清水冲洗尿道口周围；开始排尿，将前段尿弃去，留取中段尿约5—10ml直接排入无菌试管中，尿量不少于1ml，盖好盖子立即送检。婴儿消毒其阴部后，将无菌小瓶直接对准尿道口以橡皮膏贴于皮肤上，待排尿后立即送检。该方法简单、易行，但易受到会阴部细菌污染，应由医护人员采集或在医护人员指导下由患者正确留取。

2、耻骨上膀胱穿刺法：使用无菌注射器直接从耻骨上经皮肤消毒穿入膀胱吸取尿液，是评估膀胱内细菌感染的“金标准”方法，尤其做厌氧菌检查时必须采用膀胱穿刺法。但本法有一定的痛苦，患者难以接受。穿刺时膀胱应充盈，皮肤严格消毒后用装有19或20号针头的注射器子啊耻骨联合距1/3处穿刺。主要用于厌氧菌培养或标本困难的婴儿尿标本。

3、导尿法：①直接导尿：按常规方法对会阴局部进行消毒后，用导尿管直接插入膀胱，获取膀胱尿液。本法可减少尿液标本的污染，准确地反映膀胱感染情况，但有可能将下尿道细菌引入膀胱，导致继发感染，一般不提倡使用。②留置导尿：可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用无菌注射器的细针斜穿管壁抽吸尿液；或拔去闭式引流的集尿袋，弃去导尿管前段尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。操作时应防止混入消毒剂或防腐剂。注意不能从集尿袋下端管口采集尿液，集尿袋内的尿液不能用于培养，导尿管末端的尿液也不能用于培养；长期留置导尿管的患者应在更换新管时留取尿标本。本法滞留导管会使膀胱带有细菌，尽可能不采用。

4、小儿收集包：对于无自控能力的小儿可应用收集包收集尿液，这种装置由于很难避免会阴部菌群污染产生假阳性，所以只有在检验结果为阴性时才有意义。如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨联合上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。

（二）标本运送和验收

标本采集后应及时送检，如不能立即送检，室温保存时间不得超过2h，4℃保存不超过8h。

第六章 核医学标本采集注意事项及流程

一、患者准备

1、饮食

原则上晨起空腹采血，但进食对核医学科检验检查项目影响不大。

2、运动

患者应在等候时注意减少运动，原则上应在平静、休息状态下采集标本，避免情绪激动、兴奋、恐惧等状态下抽血。

3、采血姿势

静坐5—10分钟后以坐位（从肘静脉）采血为佳，卧床患者可卧位采血。

二、器材选择

选用质量合格、在有效期内的一次性塑料标本采集器。

三、标本采集要求

1、标本种类

核医学科检验项目多采用静脉血标本，也有胸水、腹水、脑脊液等。

2、标本采集部位

静脉血标本常从肘静脉、腕背静脉采血。胸水、腹水、脑脊液为临床医师经相应部位无菌穿刺收集后，盛放与专用容器，及时送检。

3、避免输液时采血

绝对不允许直接从邻近输液位置采血，应从对侧手臂采血。

4、合理使用止血带

止血带不应扎得太紧，使用时间尽量缩短采血时间，见到回血应立即松开止血带，减少血行阻滞时间，采血时避免过度的握紧拳头，保证止血带应用时间不超过1min。

5、采血时“一针见血”尽量做到“一针见血”，防止溶血及血管、组织细胞损伤导致血液成份改变影响检验结果。

6、准确控制标本量

标本量一般为3—5ml。

四、标本保存及送检

采集标本后应将标本直立、静置、避免振荡、摔落。所有标本最好采用有盖容器盛放，防止灰尘、杂物混入，减少水分、气体蒸发，避免标本溅洒、污染。标本应置于阴凉处，避免阳光直射。

标本采集后尽可能立即送检，不要在室温停留时间过久。

五、标本拒收

1、经查对标本的患者姓名、性别、年龄、申请号（住院号、床号）、检验项目不吻合者。

2、未使用正确采集容器的标本。

3、严重溶血、严重血脂影响检测结果的血液标本。

4、血液的标本将严重影响检验结果者。

5、采集的标本将严重影响检验结果者。

六、标本采集流程（血液标本）

1、确认病人信息

在标本采集前必须确认病人信息与申请单是否一致，嘱咐患者做好标本采集前的准备工作，并告知相关注意事项。

2、容器选择

根据规定选择超过采血管即可。

3、容器标识

容器上需要清楚标识与申请单一致的患者姓名与编号，做到双标识。

4、扎止血带，皮肤消毒。

5、采集

按照相应的操作规程进行采集。

6、复核

标本采集后再次核对检验申请单信息、病人信息和容器标识三者是否一致，并标注采集时间。并对患者做到相应的告知。

7、标本运输及送检

标本采集后应由专人负责运输并及时送检。