转化方法和酵母质粒抽提(材料)_酵母质粒提取

2020-02-29 其他范文 下载本文

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酵母转化(快速)

侯昕

1、挑单菌落于3ml 2XYPAD培养基中,30°C 200rpm培养至菌浓度为2X108 cell/ml。(约18h)。

2、用1.5ml离心管收集菌液两次,每次1ml,13500rpm,常温离心30秒。3、4、2mg/ml carrier DNA变性,100°C 5分钟,置冰上备用。在菌中依次加入

50%PEG3350

240ul

1M LiAc

34ul 2mg/ml S.S.carrier DNA

50ul plasmid DNA(各1ug)

36ul 每加入一种后,要吸打混匀。5、6、42°C水浴1-3小时。

13500rpm离心1分钟,吸弃上清。沉淀中加500ul水,吸打均匀,100ul涂皿。

7、30°C培养两天

此方法可用于已知蛋白互做检测,将两个质粒共转化。

2×YPAD:Yeast Extract

16g

2mg/ml carrier DNA:

Peptone

32g

鲑鱼精DNA(Sima D1626)

Glucose

32g

溶于水,低温放置过夜,灭

Adenine hemisulfate

80mg

菌后-20°C保存。

d2 H2O

800ml 酵母转化(高效)

侯昕

1、挑酵母单菌落于100ml SC液体培养基中,30°C,200rpm摇至菌浓度为2X107 cell/ml(稀释20倍,OD545或OD600为0.1)。※或挑酵母单菌落于50ml 2XYPAD液体培养基中,30°C,200rpm摇至菌浓度为2X108cell/ml(稀释200倍,OD545或OD600为0.1)。

2、用两个50ml离心管分别收集40ml菌液,3000g,常温离心5分钟。

3、将菌分别转入两瓶150ml 2XYPAD培养基中,扩大培养至菌浓度为2X107cell/ml。

4、用500ml离心管收集300ml菌液,3000g,5分钟。用 200mlddH2O洗两次,将菌转入一个50ml离心管。

5、2mg/ml carrier DNA变性,100°C 5分钟,置冰上备用。

6、配Mixture:

50%PEG3350

14.4Mml

1M LiAc

2.16ml 2mg/ml S.S.carrier DNA

3ml plasmid DNA+ddH2O

2.04ml7、把Mixture加入菌沉淀中,吸打均匀。

8、42°C水域热激45分钟;每5分钟摇一下,使其受热均匀。

9、3000g,离心5分钟,弃上清,菌沉淀中加40ml水,吸打均匀,涂皿,100-200u/皿。

此方法可用于酵母双杂交文库筛选,建议分步转化。

酵母质粒抽提

侯昕

1、收集菌液,10000g,离心10秒。

2、菌沉淀中加200ul YLS,牙签打散。

3、加200ul 苯酚氯仿异戊醇(25:24:1),摇5分钟,13000rpm,离心5分钟。

4、将上层转入一新离心管中,重复3。

5、将上层转入一新离心管中,加20ul 3M NaOAc(pH5.2)、500ul乙醇,摇匀,10000g,4°C离心10-30分钟。

6、750ul 75%乙醇洗,10000g,离心5-10分钟。

7、重复6。

8、吹干,加10-20ul 水或TE。

此方法得到的质粒可用于电转大肠杆菌

Yeast lysis solution(YLS):

2%(v/v)

Triton X-100

1%(w/v)

SDS 100mM

NaCl 1mM

EDTA

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